01Mar - 2021
Autofagia: degradar para sobrevivir.
12:00 PM - 02:00 PM|Dr. José Luis Crespo
Seminario
Instituto de Bioquímica Vegetal y Fotosíntesis, CSIC-Universidad de Sevilla.
Invitado de la Dra Helena Porta
RESUMEN
La autofagia es un proceso catabólico altamente conservado en todos los organismos eucariotas mediante el cual las células degradan y reciclan su propio material, incluyendo proteínas, membranas e incluso orgánulos completos. Este proceso degradativo se caracteriza por la formación de vesículas de doble membrana denominadas autofagosomas, que engloban el material a degradar y lo envían a la vacuola o lisosoma para su degradación. La autofagia juega un importante papel en la respuesta y adaptación de los organismos eucariotas a distintos tipos de estrés, tales como la deficiencia de nutrientes o el estrés oxidativo. Estudios recientes han demostrado que la autofagia está conservada en plantas y algas y su función es esencial para que estos organismos respondan correctamente a situaciones de estrés. En este seminario se abordará la importancia que tiene la autofagia en el alga verde modelo Chlamydomonas reinhardtii y su papel en la respuesta a estrés.
Para mayores informes favor de ponerse en contacto con la Dra. Helena Porta a través de su dirección de correo electrónico.
Para mayores informes favor de ponerse en contacto con la Dra. Helena Porta a través de su dirección de correo electrónico.
Actualizado 2021-02-26 14:11:00
Biomolecular condensates in cellular stress responses and disease.
Simon Alberti. Professor of Cellular Biochemistry. Technische Universität Dresden. Center for Molecular and Cellular Bioengineering (CMCB). Biotechnology Center (BIOTEC)
Sede: Auditorio "Dr. Francisco G. Bolívar Zapata" del IBt/UNAM
01-Abril-2024 al 01-Abril-2024
05:00 PM
Dr. Rafael Martinez Gallegos
05:00 PM
Dr. Rafael Martinez Gallegos
Homologous recombination cloning: Tips, tricks and advantages
Using the endogenous homologous recombination of living organisms for cloning (HR-cloning) was first described in yeast and eventually in bacteria. Although not so widespread, this method allows the straightforward engineering of fusion proteins with the ability of exchanging elements from 1 nt to several kb within a plasmid. Therefore it can be used to manipulate codons or transcription factor target sequences as well as to study regulatory regions like full promoters or UTRs. Likewise, reporter markers can be exchanged having either N- or C-terminal variants. It also offers the possibility of engineering customized plasmids providing a different strategy to overcome difficulties in the cloning and editing of challenging DNA fragments. The manipulation steps are minimized and any recA1 bacteria strain is suitable for it. This method has been tested with common and customized plasmids with a range up to 15 kb. Its simplicity allows the implementation in any molecular biology laboratory without the requirement of any commercial Kit. I will discuss examples of HR-cloning on a wide variety of organisms, from plants to Drosophila.