12Abr - 2021
ARNS LARGOS NO CODIFICANTES EN PLANTAS: REGULADORES MISTERIOSOS
12:00 PM - 02:00 PM|Dra. Selene Fernández Valverde
Seminario
I N M E M O R I A M
DR. FEDERICO SÁNCHEZ RODRÍGUEZ
QUINTO ANIVERSARIO LUCTUOSO
INVITADA
DRA. SELENE FERNÁNDEZ VALVERDE
Genómica Funcional y Evolutiva de ARNs Regulatorios
CINVESTAV UGA-LANGEBIO
Resumen:
Mucho de lo que diferencia a las especies es la reutilización de proteínas a través de cambios en su regulación. Los ARN largos no codificantes (lncRNA) han salido a la luz recientemente como participantes clave en la maquinaria reguladora de genes de los eucariotas. Tienen diversas funciones demostradas como andamios complejos de proteínas, señuelos y reguladores epigenéticos, aunque en ejemplos individuales limitados. Dada su relevancia, el desarrollo de un marco de estudio que nos permita diferenciar los ARNn funcionales de aquellos que han perdido o aún no han adquirido la función es primordial. En esta charla discutiré los argumentos a favor y en contra de la funcionalidad de lncRNAs. ¿Qué son los lncRNA? ¿Cómo evolucionan? ¿Cómo se codifican sus funciones? Finalmente, presentaré las estrategias de investigación que estamos utilizando para comprender mejor la dinámica evolutiva de lncRNA dirigida a facilitar la identificación de lncRNA funcionales en plantas.
Para mayores informes favor de ponerse en contacto con la M.C. Carmen Quinto
Actualizado 2021-04-09 14:03:51
Biomolecular condensates in cellular stress responses and disease.
Simon Alberti. Professor of Cellular Biochemistry. Technische Universität Dresden. Center for Molecular and Cellular Bioengineering (CMCB). Biotechnology Center (BIOTEC)
Sede: Auditorio "Dr. Francisco G. Bolívar Zapata" del IBt/UNAM
01-Abril-2024 al 01-Abril-2024
05:00 PM
Dr. Rafael Martinez Gallegos
05:00 PM
Dr. Rafael Martinez Gallegos
Homologous recombination cloning: Tips, tricks and advantages
Using the endogenous homologous recombination of living organisms for cloning (HR-cloning) was first described in yeast and eventually in bacteria. Although not so widespread, this method allows the straightforward engineering of fusion proteins with the ability of exchanging elements from 1 nt to several kb within a plasmid. Therefore it can be used to manipulate codons or transcription factor target sequences as well as to study regulatory regions like full promoters or UTRs. Likewise, reporter markers can be exchanged having either N- or C-terminal variants. It also offers the possibility of engineering customized plasmids providing a different strategy to overcome difficulties in the cloning and editing of challenging DNA fragments. The manipulation steps are minimized and any recA1 bacteria strain is suitable for it. This method has been tested with common and customized plasmids with a range up to 15 kb. Its simplicity allows the implementation in any molecular biology laboratory without the requirement of any commercial Kit. I will discuss examples of HR-cloning on a wide variety of organisms, from plants to Drosophila.